百奧益康動物組織細胞核懸液制備試劑盒

Multi Tissue Nuclei Isolation Kit

（貨號：BA3302）

 

 

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百奧益康動物組織細胞核懸液制備試劑盒，專為從動物組織中分離高純度單細胞核而設計。其獨特的配方和優化的流程，能夠高效地從復雜樣本中提取高質量的細胞核懸液，為高通量單細胞測序等前沿研究提供可靠的解決方案。

 

 

 

 

 

產品優勢

 

 

 

適用物種廣：適用于人及其他哺乳動物的多種樣本類型，包括細胞懸液、新鮮組織及凍存組織等，突破傳統解離法對樣本活性的依賴。

 

應用場景多：可用于單細胞核轉錄組測序、單細胞ATAC測序等相關實驗，助力科研人員深入探索細胞核相關的生物學信息。

 

性能卓越：制備的單細胞核懸液質量高，細胞核數充足，核膜完整，完全滿足單細胞測序等下游實驗的嚴格要求。

 

 

數據優異：在測試實驗中，使用該試劑盒制備的小鼠腦和心肌組織細胞核懸液的質檢結果理想，為高質量的研究數據提供了保障。 

 

 

實踐經驗豐富：基于超過10,000個樣本、150余種組織類型的組織解離經驗開發而成，歷經多年實驗驗證。

 

 

 

 

 

競品對比

 

 

 

在凍存小鼠腦組織的細胞核提取對比實驗中，百奧益康動物組織細胞核懸液制備試劑盒展現出顯著優勢。實驗數據顯示，本試劑盒制備的細胞核懸液質量更高，細胞核完整性更好，有核率顯著提升。

 

 

 

 

 

測試效果

 

 

 

我們對凍存的小鼠腦和心肌組織進行了實驗，結果顯示百奧益康細胞核懸液制備試劑盒獲得的細胞核懸液有核率高、結團率低、背景干凈、核膜完整，能滿足單細胞核轉錄組測序實驗。

 

 

 

測試流程：

 

 

 

 

測試結果：

 

 

 

不同組織利用細胞核懸液制備試劑盒獲得的單細胞核懸液質檢結果

 

 

 

小鼠腦（左）、心?。ㄓ遥﹩渭毎藨乙虹R檢圖

 

 

 

 

項目實測

 

 

目前我們已完成大量用該細胞核制備試劑盒處理的凍存樣本的單細胞核測序項目，涉及的組織類型眾多，以下展示部分項目數據，結果表明該試劑盒處理的細胞核懸液有核率高、結團率低、背景干凈、核膜完整，測序后獲得的數據基因中位數高，線粒體比例低，整體表現優異！

 

 

 

部分項目實測不同類型組織制備細胞核懸液后數據表現

 

 

 

 

 

部分項目實測不同類型組織制備細胞核懸液后鏡檢結果

 

 

 

 

 

 

 

 

 

部分項目實測不同類型組織制備細胞核懸液后單細胞核測序分群表現

 

注：數據均經對應項目的客戶同意后發布

 

 

 

 

 

 

產品宣傳頁

 

 

 

 

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產品說明書

 

 

 

 

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訂購信息

 

 

 

 

 

產品名稱	產品貨號	產品規格	目錄價格
動物組織細胞核懸液制備試劑盒	BA3302-10	10 rxns	¥1,888
	BA3302-50	50 rxns	¥7,999

 

 

 

 

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產品FAQ

 

 

 

1.    Q：這款試劑盒僅適用于新鮮動物組織嗎？人源組織或凍存組織能否使用？

A：不僅適用于新鮮動物組織，還可用于人或其他哺乳動物的細胞懸液及凍存組織。無論是新鮮樣本還是凍存樣本，均需按照說明書步驟處理，再進行后續的研磨、裂解等操作，以保證細胞核提取效果。

 

2.    Q：試劑盒中的裂解液、前懸液和后懸液添加 BSA 時，終濃度要求不同，具體該如何計算添加量？

A：需根據實際使用的試劑體積計算。例如，若使用 10mL 裂解液，BSA 終濃度需為 1%，若所用 BSA 原液濃度為 10%，則需添加的 BSA 體積 =（10mL×1%）÷10%=1mL；若使用 15mL 前懸液，BSA 終濃度 1.5%，BSA 原液濃度 10%，則添加量 =（15mL×1.5%）÷10%=2.25mL。需注意根據樣本所需試劑體積現用現配，確保濃度準確(直接使用原液BSA，否則會影響密度)。

 

3.    Q：進行細胞核 RNA 相關實驗時，RNase 抑制劑的添加有明確標準，那非 RNA 相關實驗是否需要添加？若未按要求添加會有什么影響？

A：非 RNA 相關實驗無需添加 RNase 抑制劑。若在 RNA 相關實驗中未添加或添加量不足，樣本中的 RNA 會被 RNase 降解，導致后續單細胞核轉錄組測序等 RNA 相關實驗無法獲取有效數據，直接影響實驗結果準確性；非 RNA 相關實驗因不涉及 RNA 檢測，不添加不會對細胞核提取及后續實驗（如單細胞 ATAC 測序）造成影響。

 

4.    Q：操作步驟中提到研磨后需靜置 2-3 分鐘且不超過 3 分鐘，靜置時間過短或過長會帶來什么問題？

A：靜置時間過短，組織勻漿中的細胞碎片與細胞核分離不充分，后續過濾時易導致細胞核被雜質包裹，影響純度；靜置時間過長，部分細胞核可能會因長時間處于裂解液環境中，核膜穩定性下降，出現破裂情況，降低細胞核得率。因此需嚴格控制在 2-3 分鐘內。

 

5.    Q：離心步驟對離心機類型和參數要求嚴格，若使用垂直離心機而非水平離心機，或未按規定設置加速度、減速度，會有什么后果？

A：必須使用水平離心機，垂直離心機無法使樣本在離心過程中均勻分層，會導致細胞核與雜質分離不徹底，影響提取純度。若未設置居中的加速度和減速度，離心初期加速度過快或后期減速度過快，會產生較大的離心力沖擊，可能破壞細胞核結構，導致核破裂，同時也會影響溶液分層效果，難以準確收集核層。

 

6.    Q：步驟 7 和步驟 11 分別提到使用 5mL 和 15mL 離心管，能否用其他規格離心管替代？替代后可能出現什么問題？

A：不建議替代。步驟 7 中轉移 600μL 混合溶液至 5mL 離心管，該規格離心管能為后續添加 PB2、PB3 及溶液分層提供充足空間，且便于操作；若用更小規格（如 2mL），溶液易溢出，且分層不明顯。步驟 11 收集濾液用 15mL 離心管，可容納較多濾液，若用 5mL，可能需要多次轉移，增加污染風險，且不利于后續離心操作。

 

7.    Q：自備材料中提到需要 40μm 和 10μm 細胞篩，這兩種篩網的使用場景有何不同？能否只使用其中一種？

A：40μm 細胞篩用于研磨后樣本的初次過濾，主要去除較大的組織碎片，保證濾液中細胞核初步純化；10μm 細胞篩用于質控時，若明場觀察存在大于細胞核的碎片且細胞核量足夠，進一步去除雜質，提升純度。不能只使用一種，若僅用 40μm，可能殘留較小雜質影響后續實驗；僅用 10μm，初次過濾時較大組織碎片易堵塞篩網，導致過濾困難，降低實驗效率。

 

8.    Q：試劑盒保存條件為 4℃避光，若短時間（如 1-2 小時）在室溫下放置，會影響試劑性能和實驗結果嗎？

 

A：短時間 1-2 小時室溫放置通常不會嚴重影響試劑性能，但需避免陽光直射。若室溫較高（如超過 25℃），長時間放置可能導致部分試劑成分穩定性下降，如裂解液中的表面活性劑活性降低，影響細胞膜破壞效果；前懸液、后懸液中的成分可能發生輕微變化，影響細胞核保存。因此，取出試劑后應盡快使用，未用完的及時放回 4℃冰箱。

 

9.    Q：步驟 14 中根據所需細胞核濃度選擇后懸液體積重懸沉淀，如何判斷所需濃度是否合適？若濃度過高或過低該如何調整？

A：需根據后續實驗要求判斷，例如單細胞核轉錄組測序通常要求細胞核濃度在 1000-5000 個 /μL?？赏ㄟ^細胞計數儀計數確定濃度，若濃度過高，可添加適量后懸液稀釋，每次添加后充分混勻并重新計數，直至達到目標濃度；若濃度過低，可將懸液在 4℃、300×g 條件下離心 5 分鐘，棄部分上清，再用少量后懸液重懸，提升濃度。

 

10.    Q：若實驗過程中不慎污染試劑或樣本，有什么補救措施？若無法補救，是否需要重新購買試劑盒？

A：樣本或試劑內部已明顯污染（如出現渾濁、異味），則無有效補救措施，需丟棄污染的樣本和試劑。若污染的試劑為試劑盒關鍵組分且無法替代，需重新購買試劑盒，避免因污染影響實驗結果，導致實驗失敗。